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Publikation

Naumann, C.; Müller, J.; Sakhonwasee, S.; Wieghaus, A.; Hause, G.; Heisters, M.; Bürstenbinder, K.; Abel, S.; The Local Phosphate Deficiency Response Activates Endoplasmic Reticulum Stress-Dependent Autophagy Plant Physiol. 179 460-476 (2019) DOI: 10.1104/pp.18.01379
  • Abstract
  • BibText
  • RIS

Inorganic phosphate (Pi) is often a limiting plant nutrient. In members of the Brassicaceae family, such as Arabidopsis (Arabidopsis thaliana), Pi deprivation reshapes root system architecture to favor topsoil foraging. It does so by inhibiting primary root extension and stimulating lateral root formation. Root growth inhibition from phosphate (Pi) deficiency is triggered by iron-stimulated, apoplastic reactive oxygen species generation and cell wall modifications, which impair cell-to-cell communication and meristem maintenance. These processes require LOW PHOSPHATE RESPONSE1 (LPR1), a cell wall-targeted ferroxidase, and PHOSPHATE DEFICIENCY RESPONSE2 (PDR2), the single endoplasmic reticulum (ER)-resident P5-type ATPase (AtP5A), which is thought to control LPR1 secretion or activity. Autophagy is a conserved process involving the vacuolar degradation of cellular components. While the function of autophagy is well established under nutrient starvation (C, N, or S), it remains to be explored under Pi deprivation. Because AtP5A/PDR2 likely functions in the ER stress response, we analyzed the effect of Pi limitation on autophagy. Our comparative study of mutants defective in the local Pi deficiency response, ER stress response, and autophagy demonstrated that ER stress-dependent autophagy is rapidly activated as part of the developmental root response to Pi limitation and requires the genetic PDR2-LPR1 module. We conclude that Pi-dependent activation of autophagy in the root apex is a consequence of local Pi sensing and the associated ER stress response, rather than a means for systemic recycling of the macronutrient.

Publikation

Vicente, J.; Mendiondo, G. M.; Pauwels, J.; Pastor, V.; Izquierdo, Y.; Naumann, C.; Movahedi, M.; Rooney, D.; Gibbs, D. J.; Smart, K.; Bachmair, A.; Gray, J. E.; Rajjou, L.; Castresana, C.; Ray, R. V.; Gevaert, K.; Holdsworth, M. J.; Distinct branches of the N-end rule pathway modulate the plant immune response New Phytol. 221 988-1000 (2019) DOI: 10.1111/nph.15387
  • Abstract
  • BibText
  • RIS

The N‐end rule pathway is a highly conserved constituent of the ubiquitin proteasome system, yet little is known about its biological roles.Here we explored the role of the N‐end rule pathway in the plant immune response. We investigated the genetic influences of components of the pathway and known protein substrates on physiological, biochemical and metabolic responses to pathogen infection.We show that the glutamine (Gln) deamidation and cysteine (Cys) oxidation branches are both components of the plant immune system, through the E3 ligase PROTEOLYSIS (PRT)6. In Arabidopsis thaliana Gln‐specific amino‐terminal (Nt)‐amidase (NTAQ1) controls the expression of specific defence‐response genes, activates the synthesis pathway for the phytoalexin camalexin and influences basal resistance to the hemibiotroph pathogen Pseudomonas syringae pv tomato (Pst). The Nt‐Cys ETHYLENE RESPONSE FACTOR VII transcription factor substrates enhance pathogen‐induced stomatal closure. Transgenic barley with reduced HvPRT6 expression showed enhanced resistance to Ps. japonica and Blumeria graminis f. sp. hordei, indicating a conserved role of the pathway.We propose that that separate branches of the N‐end rule pathway act as distinct components of the plant immune response in flowering plants.

Publikation

Goslin, K.; Eschen-Lippold, L.; Naumann, C.; Linster, E.; Sorel, M.; Klecker, M.; de Marchi, R.; Kind, A.; Wirtz, M.; Lee, J.; Rajjou, L.; Graciet, E.; Differential N-end Rule Degradation of RIN4/NOI Fragments Generated by the AvrRpt2 Effector Protease Plant Physiol. 180 2272-2289 (2019) DOI: 10.1104/pp.19.00251
  • Abstract
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In plants, the protein RPM1-INTERACTING PROTEIN4 (RIN4) is a central regulator of both pattern-triggered immunity and effector-triggered immunity. RIN4 is targeted by several effectors, including the Pseudomonas syringae protease effector AvrRpt2. Cleavage of RIN4 by AvrRpt2 generates potentially unstable RIN4 fragments, whose degradation leads to the activation of the resistance protein RESISTANT TO P. SYRINGAE2. Hence, identifying the determinants of RIN4 degradation is key to understanding RESISTANT TO P. SYRINGAE2–mediated effector-triggered immunity, as well as virulence functions of AvrRpt2. In addition to RIN4, AvrRpt2 cleaves host proteins from the nitrate-induced (NOI) domain family. Although cleavage of NOI domain proteins by AvrRpt2 may contribute to pattern-triggered immunity regulation, the (in)stability of these proteolytic fragments and the determinants regulating their stability remain unexamined. Notably, a common feature of RIN4, and of many NOI domain protein fragments generated by AvrRpt2 cleavage, is the exposure of a new N-terminal residue that is destabilizing according to the N-end rule. Using antibodies raised against endogenous RIN4, we show that the destabilization of AvrRpt2-cleaved RIN4 fragments is independent of the N-end rule pathway (recently renamed the N-degron pathway). By contrast, several NOI domain protein fragments are genuine substrates of the N-degron pathway. The discovery of this set of substrates considerably expands the number of known proteins targeted for degradation by this ubiquitin-dependent pathway in plants. These results advance our current understanding of the role of AvrRpt2 in promoting bacterial virulence.

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